目的 探讨PIK3CA基因突变在转移性结直肠癌(metastatic colorectal cancer,mCRC)领域的研究现状、热点和趋势。
方法 在Web of Science核心数据库中检索PIK3CA基因突变在mCRC领域相关研究文献。检索时限为建库至2025年7月17日。利用CiteSpace 6.3.R1软件对年度发文量、文献被引频次、国家、机构和关键词等进行可视化分析,并对关键词进行聚类和突现分析。
结果 共纳入514篇文献,该领域年度发文量整体呈平稳趋势。发文量最多的机构是得克萨斯大学系统。美国在发文数量及中心性方面均居首位。当前该领域的研究热点主要集中在PIK3CA在mCRC中的作用机制、其在治疗及耐药方面的应用,以及液体活检技术的相关研究。
结论 PIK3CA在mCRC治疗方面有巨大潜力,通过相关基因研究、联合治疗等方法,或可为mCRC的治疗提供新策略。
转移性结直肠癌(metastatic colorectal cancer,mCRC)是全球癌症相关死亡的主要原因之一,其5年生存率不足15%[1]。随着精准医学的发展,磷脂酰肌醇-3-激酶催化亚基α(Phosphatidylinositol-4,5-Bisphosphate 3-Kinase Catalytic Subunit Alpha,PIK3CA),即编码PI3K催化亚基p110α的基因,其异常活化被证实是mCRC的关键驱动因素,约15%~20%的患者携带PIK3CA突变和/或拷贝数扩增,此类变异通过持续激活PI3K/AKT/mTOR信号通路促进肿瘤进展、转移及治疗耐药[2]。近年来,围绕PIK3CA的多维度研究,包括基因拷贝数变异、表达调控及基于循环肿瘤DNA(circulating tumor DNA,ctDNA)的动态监测已成为靶向治疗和预后评估探索的重要方向[3-4]。本研究采用文献计量学方法,通过科学知识图谱可视化技术系统梳理PIK3CA基因突变在mCRC领域的研究热点与演进趋势,旨在揭示当前研究的聚类结构与跨主题关联,为未来靶向策略开发与转化研究提供参考依据。
1 资料与方法
1.1 文献来源与检索策略
在Web of ScienceTM数据库中进行检索,选择Web of Science Core Collection和Science Citation Index Expanded(SCI-EXPANDED)作为数据来源。检索方式为TS(主题)。英文检索式为(TS=(metastatic colorectal cancer)) OR TS=(mCRC)) AND (((TS=(PIK3CA)) OR TS=(PI3K catalytic subunit)) OR TS=(phosphatidylinositol-3-kinase)。检索时限为建库至2025年7月17日。语种选择English,文献类型选择Article和Review。
1.2 纳入与排除标准
纳入标准:①研究主题为PIK3CA基因突变在mCRC中相关研究的文献;②文献内容完整;③文献类型为Article或Review。排除标准:①研究内容与PIK3CA基因突变在mCRC中研究不相关的文献;②会议摘要、修订、新闻、个案报道等类型文献;③重复发表的文献。
1.3 数据提取及分析
将检索到的文献以“全记录与引用参考文献”纯文本格式导出。使用CiteSpace 6.3.R1软件去除重复文献。利用Web of Science提供的文献分析功能,对年度发文量和引文量进行统计。通过CiteSpace 6.3.R1软件提取纳入文献的原始数据,提取的信息包括作者、国家、机构、关键词等。对纳入文献的作者、国家、机构、关键词、高被引文献等进行可视化分析。
2 结果
2.1 年发文量分析
共纳入514篇文献,该领域最早的相关文献发表于2001年,年发文量变化趋势呈现显著的阶段性特征。2001—2009年为缓慢积累期,年均发文量不足10篇;2010年起进入快速扩张期;2014—2017年为高峰期,其中2015年达到峰值(48篇);2018—2024年发文量趋稳(年均约28篇);2025年仅纳入不足8个月的数据,发文量为11篇,虽不能准确反映全年水平,但具有一定的参考价值。详见图1。
2.2 文献被引频次分析
采用CiteSpace 6.3.R1软件对纳入的514篇文献进行分析。时间跨度设置为2001-01至2025-07,时间切片为1年,使用G-index k =5对参考文献进行分析,设置Top N=50,绘制可视化图谱,节点=298,连线度=1 357,密度=0.030 7,被引频次排名前5的文献见表1。其中De Roock W等[5]发表的研究为目前引用频次最高的论文,该研究首次通过大样本多中心数据(n=773)证实PIK3CA突变是mCRC患者接受西妥昔单抗联合化疗的独立负向预测标志物,确立了PIK3CA在抗EGFR治疗耐药层级中的关键地位,为后续基于多基因panel的精准治疗决策提供了临床证据基础。
2.3 发文机构与国家共现分析
在CiteSpace 6.3.R1软件中,选择节点类型为机构(Institution),获得发文机构可视化图谱。图谱显示,节点=295,连接度=953,密度=0.022,见图2。发文量排名前5的机构见表2,发文量较高的机构是得克萨斯大学系统(26篇)和得克萨斯大学MD安德森癌症中心(25篇)。选择国家(Country)为节点类型,获得发文国家可视化图谱。图谱显示,节点=47,连接度=175,密度=0.161 9,见图3。发文量排名前5的国家见表3,发文量最高的国家是美国,共发文140篇,中心性最高(0.64)。
2.4 关键词共现和聚类分析
在CiteSpace 6.3.R1软件中选用关键词(Keyword)为节点类型进行可视化分析,关键词共现图谱得到233个节点,1 910条连线,密度为0.070 7,见图4。其中,出现频次 ≥ 70次的关键词有11个,排名前3的依次为colorectal cancer(结直肠癌,199次)、Cetuximab(西妥昔单抗,105次)、metastatic colorectal cancer(转移性结直肠癌,100次),见表4。中介中心性排名前2的关键词是colorectal cancer(结直肠癌,0.21)、expression(表达水平,0.19),见表5。对关键词进行聚类分析,得到5个聚类模块(图5),分别为#0 resistance(耐药性)、#1 liquid biopsy(液体活检)、#2 pi3k(PI3K通路)、#3 colon cancer(结肠癌)、#4 carcinoma cells(癌细胞)。关键词聚类图谱Q值为0.307( > 0.3),S值为0.770 3( > 0.7),说明聚类效率准确可信[10]。时间线图将抽象的时间逻辑转化为直观视觉模式,能体现各个聚类在不同时间的研究状况,如图6所示,可见多个聚类模块相互重叠,提示聚类之间联系相对紧密。
2.5 关键词突现分析
突现词在某种程度上可以预测该领域的研究前沿[11]。利用CiteSpace 6.3.R1软件中的Burstness(突现)功能,对关键词进行突现分析,见图7。结果显示,突现词强度排名前3的依次为gene copy number(基因拷贝数,9.93)、cetuximab plus irinotecan(西妥昔单抗联合伊立替康方案,9.77)、growth factor receptor(生长因子受体,8.51)。根据突现词分析,早期主要为靶向治疗探索期(2005—2014年),其后为耐药机制深化期(2014—2020年),近年进入精准干预新时期(2020—2025年)。
3 讨论
近年来,PIK3CA基因突变在mCRC中的相关研究发文量基本处于稳定趋势,提示学术界对该研究领域持续关注,反映了mCRC研究领域的一种热门研究方向。从发文国家来看,美国发文量(140篇)居世界首位,国家共现分析显示美国的发文量及中心性均占据首位,表明美国在国际合作、跨学科协作及高影响力论文产出方面具有显著优势;中国发文量(72篇)居第三位,说明中国在该领域具有一定国际影响力,但中国的中心性较低,可能与研究机构间合作网络分散、国际交流不足有关。从发文机构看,该领域发文量最多的机构是得克萨斯大学系统,但整体机构间合作较分散。提示国家、机构间应增加合作交流,博采众长,开拓思维。
关键词是论文内容的高度概括及核心主题,关键词共现、聚类和突现分析能够反映相关领域的研究热点,对预测未来研究方向具有重要意义。结合关键词分析结果可知,PIK3CA基因突变在mCRC中的研究热点主要集中在PIK3CA在mCRC中的作用机制研究、PIK3CA在mCRC治疗及耐药的机制研究,以及液体活检技术相关研究。
关键词聚类#2 pi3k及突现分析中的PIK3CA突变,提示目前PIK3CA基因在mCRC中的作用机制研究是热点方向。磷脂酰肌醇激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)位于细胞质中,由两个亚基组成,分别是调控亚基p85和催化亚基p110。PIK3CA基因编码PI3K蛋白的催化亚基(p110α),参与调控细胞生长、增殖、存活和代谢的PI3K/AKT/mTOR信号通路,其突变导致PI3K/AKT/mTOR信号通路持续激活,促进肿瘤增殖、转移和耐药[12]。PIK3CA突变常与KRAS/BRAF野生型共存,且与表观遗传修饰基因(如DNA损伤应答基因)突变相关[13-14]。PIK3CA介导的肿瘤转移机制,离不开PI3K/AKT通路的调控作用。一方面,LIN28B通过PI3K/AKT通路驱动结直肠癌细胞的肝转移[15];另一方面,CXCL16通过PI3K/AKT/FOXO3a轴诱导Kupffer细胞极化,促进结直肠癌细胞的肝定植[16]。Wang等[17]的一项最新研究显示,结直肠癌细胞通过外泌体将PIK3CA H1047R突变DNA递送至正常成纤维细胞,诱导其转化为癌相关成纤维细胞(cancer-associated fibroblasts,CAFs),CAFs分泌白细胞介素-6(interleukin-6,IL-6)激活STAT3通路,促进肿瘤上皮-间质转化(epithelial-mesenchymal transition,EMT)和肺转移前肿瘤微环境形成。这些研究共同提示了PIK3CA突变在mCRC中不仅发挥经典的信号通路激活作用,而且可通过多层次(细胞内、细胞间、器官间)及多机制(信号通路、免疫调节、外泌体通讯、微环境重塑)协同驱动肿瘤进展和转移。值得关注的是,PIK3CA突变可通过外泌体传递其遗传信息,重塑转移前微环境,这一发现颠覆了传统认知,凸显了其在介导肿瘤-宿主互作,促进肿瘤全身性播散中的重要作用。
结合关键词聚类#0 resistance(耐药性)及突现分析中出现的多个靶向治疗药物,提示目前PIK3CA基因在mCRC中的治疗及耐药方面的研究也是热点方向。PIK3CA基因与mCRC相关研究主要集中在化疗、靶向治疗方面。在化疗方面,Liu等[18]研究发现PIK3CA E545K突变通过抑制细胞凋亡和增加细胞活力,在体外和体内实验中均显示出对奥沙利铂的耐药性,揭示了PIK3CA E545K突变可通过上调APOA5转录促进L-OHP耐药性,提示APOA5或可作为提高奥沙利铂化疗敏感性的潜在靶点。在靶向治疗方面,对PI3K抑制剂的开发研究及相关药物耐药性研究是重点,PI3K抑制剂主要包括泛PI3K抑制剂、mTOR/PI3K双重抑制剂、选择性PI3K抑制剂等[19]。关于PIK3CA突变对西妥昔单抗疗效的影响,现有证据尚存争议。有研究显示单纯PIK3CA突变可能不影响西妥昔单抗疗效[20]。但PIK3CA突变型肿瘤常伴其他表观遗传修饰基因突变(如ARID1A),这会显著加剧耐药[14]。因此,针对PIK3CA突变型mCRC的联合治疗策略备受关注。PI3Kα抑制剂联合卡培他滨在PIK3CA突变mCRC的Ib期试验中显示可控毒性,但疗效有限[21]。而PI3K抑制剂联合MEK/BRAF抑制剂可克服旁路激活,临床前模型证实该联合治疗策略对BRAF V600E / PIK3CA双突变有效[22]。
新型联合方案在mCRC中的治疗已成为研究热点,抗EGFR(表皮生长因子受体)疫苗联合PI3K/MAPK抑制剂可增强抗体依赖性细胞毒性(antibody-dependent cell-mediated cytotoxicity,ADCC)发挥抗肿瘤作用[23]。中药成分(如枸杞多糖)通过抑制PI3K/AKT依赖的磷酸甘露糖异构酶逆转奥沙利铂耐药[24]。此外,PIK3CA突变可能增强PD-L1表达,提示免疫联合靶向治疗的潜力[25]。鉴于PIK3CA H1047R突变在肿瘤进展中的重要性,目前的研究聚焦于靶向该突变作为潜在的治疗干预手段,有研究结果表明,外泌体PIK3CA H1047R突变可激活成纤维细胞促进结直肠癌转移,靶向特定的CAFs或释放特定的外泌体可以阻断PIK3CA H1047R的选择性包装或递送,提示了联合靶向PIK3CA H1047R突变与IL-6信号通路可能成为新的治疗策略[17]。目前已有大量研究靶向IL-6用于肿瘤治疗,但同时与PIK3CA H1047R突变联合靶向的策略尚未见报道。因此,精确地同时靶向PIK3CA H1047R突变和IL-6信号通路对于指导个体化治疗至关重要。PIK3CA在mCRC治疗领域的研究,揭示了肿瘤耐药的本质是肿瘤微环境的适应性重塑。克服PIK3CA相关耐药,需将治疗策略从单纯清除突变癌细胞,拓展到瓦解其赖以生存的微环境,而多通路靶向策略研究正是实现这一目标的前沿方向。
突现分析结果显示liquid biopsy(液体活检)及circulating tumor dna(循环肿瘤DNA,ctDNA)分别自2020年和2021年突现后持续至今,结合关键词聚类#1 liquid biopsy(液体活检)提示目前液体活检技术是近年来PIK3CA基因在mCRC中的研究热点。液体活检通过ctDNA实现无创性基因分型,可以克服肿瘤异质性。高灵敏度高通量测序技术(next-generation sequencing,NGS)panel可同时检测PIK3CA、KRAS、BRAF等多基因突变[26]。通过动态监测ctDNA,可在影像学发现病灶进展之前检出耐药突变[27]。ctDNA中PIK3CA突变与组织活检一致性达89%,尤其适用于无法获取组织的患者[28]。基于ctDNA的PIK3CA突变监测可预测抗EGFR治疗后继发性耐药[29]。ctDNA动态分析可筛选PIK3CA抑制剂获益人群,避免无效治疗[30]。液体活检需要统一ctDNA检测阈值和NGS panel设计,此外,原发灶与转移灶PIK3CA突变存在异质性,需要通过多部位液体活检来优化检测策略,而非仅依赖单一部位标本[31]。液体活检在PIK3CA突变mCRC领域的研究,推动了肿瘤诊疗向动态基因组监测模式转变。其实时监测能力为耐药机制的动态解析提供了技术支撑,也为临床治疗的主动干预创造了条件。未来可重点发展整合AI的液体活检平台、探索液体活检引导的适应性临床试验,并整合多组学液体标志物,进一步优化mCRC患者个性化治疗方案。
结合关键词突现结果,未来该领域的研究趋势主要集中在以下几个方面:①靶向治疗深化与耐药机制探索:pik3ca(突现强度4.79)和pik3ca mutations(PIK3CA突变,突现强度3.34)持续处于活跃状态,表明针对该基因的靶向药物开发(如PI3K抑制剂)仍是热点研究方向。heterogeneity(异质性,突现强度6.58)和evolution(进化,突现强度3.48)关键词的突现,提示肿瘤异质性和克隆进化所驱动的耐药机制仍需深入解析,未来研究将聚焦联合用药策略(如抗EGFR与PI3K通路)以期有效克服耐药。②液体活检技术驱动精准诊疗:liquid biopsy(液体活检,突现强度4.33)和circulating tumor DNA(循环肿瘤DNA,突现强度4.1)均持续突现至2025年,反映无创动态监测已成为重要发展趋势。未来研究将进一步整合ctDNA检测技术,实时追踪PIK3CA等基因突变动态,以指导治疗方案调整及预后评估,从而推动个体化医疗。③RAS通路交叉研究与临床转化:ras mutations(RAS突变,突现强度6.91)呈现长期突现(2016—2021年),提示PIK3CA与RAS/KRAS通路的交互作用需进一步阐明。同时,open label(开放标签,突现强度5.59)的兴起(2020—2025年)表明,未来应加强针对PIK3CA靶向治疗的临床试验设计,验证其与现有疗法(如抗EGFR单抗)之间的协同效应。综上,未来mCRC的PIK3CA研究将形成“机制探索—技术应用—临床验证”的闭环,深入耐药与异质性机制,依托液体活检实现动态基因组监测,并通过创新临床试验推动联合治疗策略的临床转化。
本研究基于Web of Science数据库进行文献可视化分析,在一定程度上揭示了该领域的研究现状、热点和发展趋势。由于本研究数据仅来自单个数据库,得出的结论可能具有一定局限性,今后可在PubMed、中国知网等中外文数据库中进行补充检索。近年来,mCRC治疗一直是医学领域的研究热点,其中PIK3CA基因展现出重要的靶向治疗潜力,但其临床应用需综合考虑基因组背景、肿瘤微环境及动态克隆演化等因素。未来研究需整合多组学数据与液体活检等实时监测技术,探索PI3K抑制剂与免疫/代谢调节剂的联合策略,通过多学科交叉创新,加速靶向治疗从基础向临床的转化,给患者带来更多生存获益。
1. SungH, FerlayJ, SiegelRL, et al. Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries[J]. CA Cancer J Clin, 2021, 71(3): 209-249. DOI: 10.3322/caac.21660.
2. VasanN, BaselgaJ, HymanDM. A view on drug resistance in cancer[J]. Nature, 2019, 575 (7782): 299-309. DOI: 10.1038/s41586-019-1730-1.
3. SiravegnaG, MarsoniS, SienaS, et al. Integrating liquid biopsies into the management of cancer[J]. Nat Rev Clin Oncol, 2017, 14 (9): 531-548. DOI: 10.1038/nrclinonc.2017.14.
4. ParikhAR, LeshchinerI, ElaginaL, et al. Liquid versus tissue biopsy for detecting acquired resistance and tumor heterogeneity in gastrointestinal cancers[J]. Nat Med, 2019, 25 (9): 1415-1421. DOI: 10.1038/s41591-019-0561-9.
5. De RoockW, ClaesB, BernasconiD, et al. Effects of KRAS, BRAF, NRAS, and PIK3CA mutations on the efficacy of cetuximab plus chemotherapy in chemotherapy-refractory metastatic colorectal cancer: a retrospective consortium analysis[J]. Lancet Oncol, 2010, 11(8): 753-762. DOI: 10.1016/S1470-2045(10)70130-3.
6. Sartore-BianchiA, Di NicolantonioF, NichelattiM, et al. Multi-determinants analysis of molecular alterations for predicting clinical benefit to EGFR-targeted monoclonal antibodies in colorectal cancer[J]. PLoS One, 2009, 4(10): e7287. DOI: 10.1371/journal.pone.0007287.
7. AmadoRG, WolfM, PeetersM, et al. Wild-type KRAS is required for panitumumab efficacy in patients with metastatic colorectal cancer[J]. J Clin Oncol, 2008, 26(10): 1626-34. DOI: 10.1200/JCO.2007.14.7116.
8. DouillardJY, OlinerKS, SienaS, et al. Panitumumab-FOLFOX4 treatment and RAS mutations in colorectal cancer[J]. N Engl J Med, 2013, 369(11): 1023-1034. DOI: 10.1056/NEJMoa1305275.
9. Di NicolantonioF, MartiniM, MolinariF, et al. Wild-type BRAF is required for response to panitumumab or cetuximab in metastatic colorectal cancer[J]. J Clin Oncol, 2008, 26(35): 5705-5712. DOI: 10.1200/JCO.2008.18.0786.
10. 陈悦, 陈超美, 刘则渊, 等. CiteSpace知识图谱的方法论功能[J]. 科学学研究, 2015, 33 (2): 242-253.ChenY, ChenCM, LiuZY, et al. The methodology function of CiteSpace mapping knowledge domains[J]. Studies in Science of Science, 2015, 33(2): 242-253. DOI: 10.16192/j.cnki.1003-2053.2015.02.009.
11. 齐虹, 闫静璇. 基于知识图谱的我国信息行为研究态势分析[J]. 现代情报, 2018, 38(5): 131-139.QiH, YanJX. Analysis of information behavior research situation in China based on knowledge map[J]. Journal of Modern Information, 2018, 38(5): 131-139. DOI: 10.3969/j.issn.1008-0821.2018.05.021.
12. PolivkaJJr, JankuF. Molecular targets for cancer therapy in the PI3K/AKT/mTOR pathway[J]. Pharmacol Ther, 2014, 142(2): 164-175. DOI: 10.1016/j.pharmthera.2013.12.004.
13. AfrăsânieVA, MarincaMV, GaftonB, et al. Clinical, pathological and molecular insights on KRAS, NRAS, BRAF, PIK3CA and TP53 mutations in metastatic colorectal cancer patients from Northeastern Romania[J]. Int J Mol Sci, 2023, 24(16): 12679. DOI: 10.3390/ijms241612679.
14. VoutsadakisIA. PIK3CA mutated colorectal cancers without KRAS, NRAS and BRAF mutations possess common and potentially targetable mutations in epigenetic modifiers and DNA damage response genes[J]. Cancer Genomics Proteomics, 2024, 21(5): 533-548. DOI: 10.21873/cgp.20470.
15. ShinAE, SugiuraK, KariukiSW, et al. LIN28B-mediated PI3K/AKT pathway activation promotes metastasis in colorectal cancer models[J]. J Clin Invest, 2025, 135(8): e186035. DOI: 10.1172/JCI186035.
16. LiuY, ZhaiYP, ZhangY, et al. High metastatic tumor-derived CXCL16 mediates liver colonization metastasis by inducing Kupffer cell polarization via the PI3K/AKT/FOXO3a pathway[J]. Neoplasia, 2025, 65: 101174. DOI: 10.1016/j.neo.2025.101174.
17. WangR, LiW, LvY, et al. Colorectal cancer cells-derived exosomal PIK3CA mutation DNA promotes tumor metastasis by activating fibroblast and affecting tumor metastatic microenvironment[J]. Adv Sci (Weinh), 2025, 12 (27): e2501792. DOI: 10.1002/advs.202501792.
18. LiuYL, XiangZ, ZhangBY, et al. APOA5 alleviates reactive oxygen species to promote oxaliplatin resistance in PIK3CA-mutated colorectal cancer[J]. Aging (Albany NY), 2024, 16(11): 9410-9436. DOI: 10.18632/aging.205872.
19. ZhuM, JinQ, XinY. Recent clinical advances in PI3K inhibitors on colorectal cancer[J]. Pharmazie, 2021, 76(12): 568-573. DOI: 10.1691/ph.2021.1820.
20. RachiglioAM, ForgioneL, PasqualeR, et al. Dynamics of RAS/BRAF mutations in cfDNA from metastatic colorectal carcinoma patients treated with polychemotherapy and anti-EGFR monoclonal antibodies[J]. Cancers (Basel), 2022, 14(4): 1052. DOI: 10.3390/cancers14041052.
21. LimAR, KimB, KimJH, et al. Phase Ib and pharmacokinetics study of alpelisib, a PIK3CA inhibitor, and capecitabine in patients with advanced solid tumors[J]. Front Oncol, 2024, 14 1390452. DOI: 10.3389/fonc.2024.1390452.
22. VoutsadakisIA. Sensitivities and dependencies of BRAF mutant colorectal cancer cell lines with or without PIK3CA mutations for discovery of vulnerabilities with therapeutic potential[J]. Medicina (Kaunas), 2022, 58(10): 1498. DOI: 10.3390/medicina58101498.
23. García-RomanS, Garzón-IbáñezM, Bertrán-AlamilloJ, et al. Vaccine antibodies against a synthetic epidermal growth factor variant enhance the antitumor effects of inhibitors targeting the MAPK/ERK and PI3K/Akt pathways[J]. Transl Oncol, 2024, 40: 101878. DOI: 10.1016/j.tranon.2024.101878.
24. MaL, AiF, XiaoH, et al. Lycium barbarum polysaccharide reverses drug resistance in oxaliplatin-resistant colon cancer cells by inhibiting PI3K/AKT-dependent phosphomannose isomerase[J]. Front Pharmacol, 2024, 15: 1367747. DOI: 10.3389/fphar.2024.1367747.
25. LuoB, LiaoM, NieB, et al. Genomic profiles and their associations with microsatellite instability status, tumor mutational burden, and programmed death ligand 1 expression in Chinese patients with colorectal cancer[J]. J Gastrointest Oncol, 2024, 15(6): 2460-2472. DOI: 10.21037/jgo-24-748.
26. MatteucciL, SulloFG, GallioC, et al. Multigene panel next-generation sequencing techniques in the management of patients with metastatic colorectal carcinoma: the way forward for personalized treatment? A single-center experience[J]. Int J Mol Sci, 2024, 25(20): 11071. DOI: 10.3390/ijms252011071.
27. LavacchiD, GelminiS, CalabriA, et al. Early changes in circulating tumor DNA (ctDNA) predict treatment response in metastatic KRAS-mutated colorectal cancer (mCRC) patients[J]. Heliyon, 2023, 9(11): e21853. DOI: 10.1016/j.heliyon.2023.e21853.
28. BayleA, BasileD, GarinetS, et al. Next-Generation sequencing targeted panel in routine care for metastatic colon cancers[J]. Cancers (Basel), 2021, 13(22): 5750. DOI: 10.3390/cancers13225750.
29. YamadaT, MatsudaA, TakahashiG, et al. Emerging RAS, BRAF, and EGFR mutations in cell-free DNA of metastatic colorectal patients are associated with both primary and secondary resistance to first-line anti-EGFR therapy[J]. Int J Clin Oncol, 2020, 25(8):1523-1532. DOI: 10.1007/s10147-020-01691-0.
30. MancaP, CoralloS, BusicoA, et al. The added value of baseline circulating tumor DNA profiling in patients with molecularly hyperselected, left-sided metastatic colorectal cancer[J]. Clin Cancer Res, 2021, 27(9): 2505-2514. DOI: 10.1158/1078-0432.CCR-20-4699.
31. SirajS, MasoodiT, SirajAK, et al. Clonal evolution and timing of metastatic colorectal cancer[J]. Cancers (Basel), 2020, 12(10): 2938. DOI: 10.3390/cancers12102938.